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【理论前沿】TLR3激动剂体外促进NK细胞抗肿瘤效应的实验研究

2021-07-19 14:58   [来源:贵州医科大学学报]   [责编:黄爱民]

【理论前沿】TLR3激动剂体外促进NK细胞抗肿瘤效应的实验研究

廖春香1,2,安媛媛1,2,车启元1,2,陈亮3,龙世棋2,王念雪1,2,杨薇4,赵星1,2

(1.贵州医科大学 组织工程与干细胞实验中心,贵州 贵阳 550004;2. 贵州医科大学 免疫学教研室,贵州 贵阳 550004;3.安顺市人民医院 胸甲乳外科,贵州 安顺 561000;4.贵州医科大学 肿瘤学教研室,贵州 贵阳 550004)

     [摘 要]目的:探讨TLR3激动剂 Poly(I:C)转染对体外扩增的人自然杀伤(NK)细胞抗肿瘤活性的影响及可能机制。方法:将体外扩增的人NK细胞分为Poly-NKelect.组[人NK细胞经电穿孔转染Poly(I:C)]、Poly-NK组[脂质体介导的Poly(I:C)并转染人NK细胞]以及NK组(单独NK细胞),采用CCK-8法检查3组细胞对人结直肠癌细胞株DLD-1细胞的杀伤率;根据实验结果选择Poly-NK组细胞进行后续实验,Poly-NK组细胞经TLR3/dsRNA复合物抑制剂处理(Poly-NKinhib.组)及TLR3下游的TBK1/IKKε复合物抑制剂BX795处理(Poly-NK+BX组),采用CCK-8法检测这两组细胞对DLD-1细胞的杀伤率,流式细胞仪检测这两组NK细胞活化标志物CD69的表达,ELISA检测干扰素-γ(IFN-γ)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)及穿孔素(perforin)的表达水平。结果:与NK组比较,Poly-NKelect.组和Poly-NK组对DLD-1细胞的杀伤率增加;与Poly-NKelect.组比较,Poly-NK组对DLD-1细胞的杀伤率更高,因此后续试验均采用Poly-NK组进行比较;与Poly-NK组比较,Poly-NK+BX组对DLD-1细胞的杀伤率降低、CD69表达降低、perforin及IFN-γ表达降低;与Poly-NK组相比,Poly-NKinhib.组对DLD-1细胞的杀伤率降低、CD69的表达下降、TNF-α及IFN-γ的表达降低。结论:Poly(I:C)可促进人NK细胞的体外抗肿瘤活性,TBK1/IKKε激酶复合体可能参与了Poly(I:C)对人NK细胞的活化。

     自然杀伤细胞(natural killer,NK)是机体固有免疫的组成细胞之一,主要分布于外周血和脾脏。在正常情况下,NK细胞通过识别细胞表面的人类白细胞抗原(human leukocyte antigen,HLA)Ⅰ类分子区分“自我”与“非我”以杀伤或诱导凋亡来清除肿瘤细胞或病毒感染细胞。活化的NK细胞可以通过分泌干扰素-γ(IFN-γ)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、穿孔素(perforin)、趋化因子等调节机体的抗肿瘤免疫应答。IFN-γ可通过促进Th1应答、抑制病毒复制、抑制肿瘤细胞增殖、诱导肿瘤细胞表达主要组织相容性复合体-Ⅰ类分子(major histicompatibility complex,MHC-Ⅰ)等发挥重要的抗肿瘤作用;NK细胞释放的perforin是一种具有成孔作用的溶细胞蛋白,在NK细胞脱颗粒时,perforin可以结合到靶细胞的质膜上,并以钙离子依赖的方式聚集,在靶细胞上形成孔并允许颗粒酶扩散到靶细胞中,使靶细胞发生裂解,perforin被认为是T细胞和NK细胞介导的溶细胞作用的关键效应分子。目前,NK细胞已被广泛用于肿瘤的过继免疫治疗中。由于NK细胞仅占外周血淋巴细胞的5%~15%,因而可以通过体外扩增以满足临床治疗的需求。实验研究已表明,体外扩增的NK细胞在肝癌、胶质母细胞瘤、白血病等多种肿瘤中均表现出良好的抗肿瘤效应。本研究探讨TLR3激动剂 Poly(I:C)转染对体外扩增的人NK细胞抗肿瘤活性的影响及可能机制,报道如下。

     1、材料与方法

     1.1细胞株及试剂

      1.1.1 细胞(株) 人结直肠癌细胞株DLD-1细胞购自中国典型培养物保藏中心(China center for type culture collection, CCT- CC),人NK细胞根据本课题组前期已建立的方案进行体外扩增并冻存备用。

     1.1.2 主要试剂  RPMI 1640、MEM、Opti- MEM减血清培养基及青霉素、链霉素、胎牛血清(FBS)均购自Gibco公司,高分子量Poly(I:C,HMW)购自美国InvivoGen公司,Lipo3000购自赛默飞公司,CCK-8试剂盒购自日本同仁化学研究所,流式检测所用的抗人FITC-CD69抗体、抗人PE-CD56抗体及相关试剂购自BioLegend公司,人perforin及人TNF-α的ELISA检测试剂盒均购自美国Abcam公司,人IFN-γ的ELISA检测试剂盒购自BD公司,TLR3/dsRNA complex inhibitor购自德国Merck公司,TBK1/ IKKε抑制剂BX795购于Abcam公司,DNA酶Ⅰ(DNaseⅠ)购自 Solarbio公司。

      1.2方法  

      1.2.1 Poly-NKelect.组及Poly-NK组细胞对DLD-1细胞的杀伤率  液氮罐中复苏一支人NK细胞,细胞量约为2×108个,复苏后加入完全培养基100 mL将细胞浓度调整为2×106个/mL,在37 ℃,5%CO2培养箱中放置2 h备用。Poly-NKelect.组细胞是将5×106个NK细胞用250 L减血清Opti-MEM培养基重悬后转移至电转杯内(避免产生气泡),放入Celetric电转仪中,电转条件为380 mV、30 ms,电转结束后加入完全培养基调整细胞浓度为2×106个/mL,置于温箱中备用(Poly-NKelect.组)。在1.5 mL离心管中加入培养基500 L,再加入脂质体2 L,再加入等体积Poly(I:C),充分混匀后室温静置30 min后与浓度为2×106个/mL的NK细胞共孵育过夜(Poly-NK组),Poly(I:C)终浓度为10 mg/L,设置单独NK细胞作为对照组(NK组)。次日将三组细胞轻轻混匀,准备3支15mL离心管并标记,用200目细胞过滤网过滤后于离心机中950rpm,离心10min,台盼蓝染色计算细胞存活率后将细胞浓度调整为3×106个/mL备用。以DLD-1细胞为靶细胞,Poly-NKelect.细胞、Poly-NK及单独NK细胞作为效应细胞,先在96孔U型反应板中加入浓度为6×105个/mL的DLD-1细胞,100 L/孔,于操作台中静置约5min,按照5:1的效靶比加入浓度为3×106个/mL 的3中不同处理方式的NK细胞,100 L/孔,用培养基补至终体积为200 L,每组3个复孔,同时设置单独培养基为空白对照组,置于温箱内作用5 h后加入20 L/孔的CCK-8溶液,置于细胞培养箱内反应2.5 h后,用酶标仪检测各孔光密度(optical density ,OD)值,NK细胞杀伤效应用死亡率(%)表示,细胞死亡率(%)=[1-(效靶细胞孔OD值-效应细胞孔OD值)/靶细胞孔OD值]×100%。

     1.2.2 Poly-NK组及Poly-NK+BX组细胞对DLD-1细胞的杀伤  根据实验1.2.1选择Poly-NK进行后续实验。根据文献查阅及前期实验摸索,选择BX795抑制剂的浓度为10 mol/L。为验证在BX795的推荐浓度下DMSO对实验的安全性,设置了相同体积的DMSO作为溶剂对照组(NK+DMSO组),将抑制剂先加入单独的NK细胞中孵育30 min,再加入Poly(I:C)置于37 ℃含5% CO2的温箱中孵育过夜。次日接板及计算方法同1.2.1。

      1.2.3  Poly-NK及Poly-NK+BX细胞的表面活化标志物CD69的表达  调整Poly-NK及Poly-NK+BX组细胞浓度为1×106个/mL,设单独NK细胞组作为对照,按每管1 mL分装到1.5 mL离心管内,离心去上清后用PBS重悬,每管加入Fc封闭液5 L ,室温封闭20 min后加入抗人FITC-CD69、抗人PE-CD56流式抗体3 L,25 ℃下避光孵育30 min,离心,用1×PBS清洗2遍,200目细胞筛过滤,用贝克曼FC500流式细胞仪进行检测,用Flowjo VX软件进行分析。

     1.2.4  Poly-NK组、Poly-NK+BX、Poly-NKinhib.组细胞perforin、IFN-γ以及TNF-α的分泌水平  将perforin、IFN-γ、TNF-α的ELISA试剂盒提前30 min恢复至室温,按说明书配制洗涤液、抗体稀释液、标准品稀释液等,将收集的NK细胞对照组、Poly-NK组、Poly-NK+BX、Poly-NKinhib.组细胞培养上清液1 500 r/min,离心10 min,每孔加入100μL上清液,每组设3个复孔和3个标准品孔,按照说明书进行操作,最后用酶标仪检测标准品的OD值,并根据标准品的浓度与OD值关系作出拟合曲线,根据回归方程计算出各组样本中perforin、IFN-γ及TNF-α的浓度。

     2结果

     2.1  Poly-NKelect.和Poly-NK组细胞对DLD-1细胞的杀伤率

     Poly-NKelect.及Poly-NK组细胞的存活率比较,差异无统计学意义。与Poly-NKelect.组比较,Poly-NK组细胞对DLD-1细胞的杀伤率更高,因此后续Poly(I:C)活化NK细胞的实验中均采用Poly-NK组进行实验。

     2.2 Poly-NK和Poly-NK+BX组对DLD-1细胞杀伤率

     与Poly-NK组比较,Poly-NK+BX组对DLD-1细胞的杀伤率降低,差异具有统计学意义;与NK组比较,,NK+DMSO组细胞存活率无明显变化,差异无统计学意义。提示TBK1/IKKε抑制剂能降低Poly(I:C)转染人NK细胞的抗肿瘤活性。

     2.3  Poly-NK和Poly-NK+BX组NK细胞表面CD69的表达  

     与NK组比较,Poly-NK组CD69表达上升,且平均荧光强度增强;与Poly-NK组相比,Poly-NK+BX组CD69的表达降低,且平均荧光强度减弱。提示TBK1/IKKε抑制剂BX795能降低Poly(I:C)转染的NK细胞CD69的表达。

     2.4 Poly-NK组及Poly-NK+BX组细胞perforin及IFN-γ的表达

     与NK组比较,Poly-NK组perforin和IFN-γ表达增加;与Poly-NK组比较,Poly-NK+BX组perforin、IFN-γ表达降低。提示Poly(I:C)活化的NK细胞抗肿瘤作用与TBK1/IKKε抑制剂相关。

      2.5 Poly-NK组及Poly-NKinhib.组细胞中TNF-α及IFN-γ的表达

      与NK组比较,Poly-NK组TNF-α、IFN-γ表达增加;与Poly-NK组比较,Poly-NKinhib.组TNF-α、IFN-γ表达降低,提示Poly(I:C)活化的NK细胞抗肿瘤作用与TLR3/dsRNA复合物抑制剂相关。

      3  讨论

     模式识别受体(Pattern-recognition recap- tors, PRRs)是机体识别病原体相关分子模式 (Pathogen-associated molecular patterns,PAMPs)或损伤相关分子模式(damage associated molecular pattern, DAMPS)的一类受体,可识别dsRNA的PRRs包括黑色素瘤分化相关基因-5 (melanoma different- tiation-associated gene-5 ,MDA-5)、视黄酸诱导基因-1 (retinoic-acid inducible gene-1,RIG-1)以及Toll样受体(toll-like receptors,TLRs)等。TLR3作为一种可以识别病毒dsRNA的受体,在识别病毒dsRNA后可引起Ⅰ型干扰素(type I interferon ,IFN-Ⅰ)的分泌,诱导干扰素调节因子-3(Interferon regulatory factor-3,IRF-3)和核因子-κB(nuclear factor-κB,NF-κB)转录因子的激活,TANK结合激酶-1 (TANK binding kinase 1,TBK1)及NF-κB抑制蛋白激酶-ɛ(nuclear factor kappa B inhibits protein kinase,IKKɛ)作为TLR3信号通路下游的信号分子,在dsRNA激活 TLR3通路后被活化并参与IFN的产生,诱导机体的抗病毒、抗肿瘤免疫。有研究发现,TLR3的激活可抑制黑色素瘤荷瘤鼠的肿瘤肺转移,抑制膀胱癌荷瘤鼠的肿瘤生长。dsRNA类似物聚肌胞苷Poly(I:C)是一种人工合成的TLR3激动剂,被认为是TLR3的配体而被TLR3识别,可以活化树突状细胞,现已作为治疗性疫苗佐剂用于黑色素瘤和乳腺癌的治疗进入了Ⅱ期临床试验。

     在此次研究中,探讨了Poly(I:C)对NK细胞的活化作用及可能的机制。结果显示,TLR3激动剂Poly(I:C)转染人NK细胞后促进了NK细胞的细胞毒作用,在抗肿瘤活性增强的同时伴随IFN-γ、perforin及TNF-α分泌增加、NK细胞活化标志物CD69的上调。而在TLR3/dsRNA复合物抑制剂或TBK1/ IKKε抑制剂BX795的作用下,NK细胞抗肿瘤活性降低,IFN-γ、perforin及TNF-α分泌减少,NK细胞活化标志物CD69表达下调,即Poly(I:C)以TLR3及TBK1/IKKε依赖的方式促进NK细胞的杀伤能力并促进分泌perforin、IFN-γ及TNF-α。以上结果提示Poly(I:C)活化的NK细胞抗肿瘤作用可能与TLR3信号通路的活化有关。本研究虽然证实TLR3通路在NK细胞抗肿瘤中发挥重要的作用,但NK细胞还可以通过MDA-5和RIG-1等PRRs来识别dsRNA发挥抗肿瘤效应,因而还需深入探讨Poly(I:C)促进NK的抗肿瘤活性的相关机制,从而为探索在肿瘤的免疫治疗中如何通过Poly(I:C)等PRRs激动剂来增强NK细胞抗肿瘤活性奠定理论及实验基础。


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